动物解剖学当中的比较解剖学(即动物形态学)指不同动物种类间的结构的研究，专论解剖学则局限于个别一种动物的结构的研究。形态解剖学的知识必须从重复的解剖和观察人类尸体当中得到。下面是小编带来的有关动物解剖实验心得，希望大家喜欢
动物解剖实验心得1
“小白兔，白又白，耳缘静脉找起来，切开动脉和静脉，一动不动真可爱。”在一开始知道这首医学“儿歌”，都是抱着玩笑的心态，不会去细想其中的种种不适。只有当自己亲自去做，把兔子放到解剖台上的一刻，你才会明白，这首“儿歌”是多么“慎入”。
既然选择了医学专业，便已预料到它的到来，也不如说是不断盼望它来的。知晓它到来的前一天，内心还蛮是期待。到与其相见的那天，只想说：“择业为医，我很抱歉。”
教室门前笼子里，好多“雪团子”，挤在一起。细看，毛绒绒的白毯子中突然立起好多萌萌的浅粉色，亮晶晶的眼睛瞬间就抓紧了我的心。所以老师在讲课，我在想办法逗兔子。老师讲的什么?兔子真可爱!
当把我们小组的“雪团子”抱回来的时候，内心明明早已接受，却还是分外不忍。特别是它在台上不断的挣扎，眼睛里泛着泪光。看看我们白衣口罩，针管麻药，活像个十恶不赦的坏蛋。因为是第一次操作，所以过程有几处失误，给它悲惨的兔生又添了几分疼苦。比如麻醉的时候，找了好几次位置，耳朵都是血淋淋的。实验的最后，将兔子的尸体放到袋子里的时候，眼睛真的是酸了。
解剖课终究是我们必须经历的，就算内心再怎么不愿，刀还是要握的。我们能做的是什么?摆正心态，操作规范，以减少它们的痛苦。
动物实验一向是极度残忍的，在自然界中不为捕食的杀戮，无疑是残忍的。但是如果没有动物实验，人类的医学事业会难以前行，医生这个行业将难以传承。每一个医学生在上实验课的时候我想都会有一种很矛盾的心理，既有强烈的罪恶感与无奈，又有很强的责任感与期待。
动物解剖实验心得2
一、课题背景：
本课题来源于北京市某高中学生的一个疑问“对照课本上的解剖图。在实际解剖中真的可以准确的辨认出各器官吗?”的确很难，因为生物课本上的解剖图过于标准，并且还配有反差很大的颜色加以区别。这对学生的进一步学习有着不利的影响。另。我校动物实体标本不很充足，可供人手一份学习的则更少。学生对动物实体标本的价值也不很了解，以致不能很好的这些珍贵的标本来丰富自己的知识。于是，我和支老师经过近三个月的讨论与筹备决定开展该研究性学习课题。
二、研究意义：
1、由具有三维立体性特征的动物实体标本取代二维平面的课本。通过具体的解剖操作了解器官的真实性状。并拍摄成纪录片供教师授课使用。
2、通过动物标本制作提高动手能力及主观能动性。
3、增加学校高质量动物实体标本的数量。
4、为学校任何组织和个人提供动物实验支持。
三、研究现状：
动物标本制作在动物资源日渐枯竭的当今有着长足的发展，而动物实验及动物解剖在今天的临床学等学科中更是占有很重要的地位。但是，在我校这是一项空白、一个新课题、一个新名词。也就是说，一切都要我们自己去摸索，去总结。
四、研究方法及内容：
1、研究方法：
采用理论教学，视频教学结合大量实操实验的方法研究生物标本制作技巧及生物器官性状。
2、研究内容：
学习研究生物器官分布及其性状。掌握动物标本制作技术。认识几种典型的器官病变。
五、研究中可能存在的问题及解决方案：
1、可能存在的问题：
①实验动物的检疫问题。即实验动物是否卫生。
②实验动物尸体善后处理手段。
③实验动物的采购与相关法律的矛盾。
④操作员操作中的意外受伤。
⑤解剖器械的管理与洗消。
⑥高危药品管理措施。
2、对应的解决方案：
①尽量使用冷冻动物，如果必须要用活的动物，则经正规途径购买经检疫的实验动物。如果达不到以上条件则会先进行体表洗消，杀死后立即进行全面洗消方可使用。
②为防止带菌动物污染环境，拟将尸体先在洗消液中洗消而后在进行密封填埋。
③认真学习有关法律，绝不以保护动物作为实验动物。
④操作员在操作前务必依当天实验的安全级别佩戴好相应的护具，课前严格检查并完善应急洗消及包扎用品。不符合要求不开始试验。
⑤解剖器械实行签字领取，签字收回以便统一处理。并依据不同实验的安全级别建立器械洗消规范。
⑥对于一些高危药品，则会尽量选择安全的替代品。绝不使用高危药品做实验。
动物解剖实验心得3
基因
)和对照组(空质粒)!其他的方面我先咱不谈，先谈谈关于尾静脉注射的经验和心得吧，希望能对对此实验困惑的同志以帮助吧!
我们实验都是拿裸鼠做的，预实验是我扎了一只，打了4-5 针一针都没进，后来让我们科的一个护士来扎都扎不进去!并且让人倍感压力的是实验组和对照组要对比，所以要求打进的肿瘤细胞量得一致!小老板很严格，要是打不好自己准挨说呢!
裸鼠很贵，练习的空间很小!后来无意中我们动物房的其他实验组要处理实验完成的老鼠，我就求了求让他们，让他们把裸鼠先别处死，我帮他忙养着，然后我可以拿来练习了。后来经过了自己的摸索和联系，现在尾静脉一次注射成功的概率在80%以上呢。现把经验总结如下：
1、准备工具,其实很简单得，园子里有人见过的，就是哪一个50ml的
离心管
，把帽上面扎一个粗得孔，尾巴可以从这个孔里传出来呢，然后在管里面打几个眼，让老鼠呼吸用。
2、把老鼠装到刚才那个装置里，在尾巴静脉注射前先要拿50℃左右的水泡一泡，1分钟，切忌用很热的水，会把尾巴烫脱皮然后感染呢。泡完后会看到尾静脉明显的充盈起来了(此步骤十分的重要)。
3、然后就该注射了，我一开始做的时候是找一个平面，就是能让尾静脉平行的面，可以东西踮起来或者用手垫着把尾静脉拉成一个平面!总的原则就是把尾静脉拉平、拉紧了。
4、然后用酒精棉球擦一擦，擦完后可以更清楚的看到尾静脉!接下来就开始注射了，我推荐大家注射时选择4号或4号半的注射器。下面是要点：“斜面向上，选择平行与尾静脉的方向刺入，不要有任何角度，刺入约0.5-1cm后退针但不要完全退出，斜面退出约一半时如果针在血管里会有血冒出，然后再次进针，进针距离要短于第一次进针距离，否则会刺穿血管!然后推注液体，此时应该不会感到有很大阻力，可以看到尾静脉血管变白，但是周围组织没有肿，此时顺利完成尾静脉注射“。
有一点需要指出的是不推荐根据推注压力感觉是否进入血管，因为这样会浪费一部分细胞，会导致计数不准!重点注意下我进针的细节，都是自己的切身感受!体会到了你就成功了!
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